Patojen Gram-Pozitif Anaerop Kokların_x000D_ Antimikrobiyal İlaçlara Duyarlılıkları:_x000D_ Türkiye’den Bir Üniversite Hastanesi Verileri

Abstract

Büyük bir anaerop bakteri topluluğu olan gram-pozitif anaerop koklar (GPAK), insan deri ve mukoza yüzeylerinin normal mikrobiyota üyeleridir. Herhangi bir yaralanma sonrasında veya bağışık yanıtınbaskılandığı durumlarda invaziv, çoğunlukla mikst enfeksiyonlara neden olabilirler. GPAK, en sık izoleedilen anaerop enfeksiyon etkenleri arasında ikinci sırada yer alır. Sınırlı sayıda çalışma olmakla birlikte,GPAK’ların antimikrobiyal ilaçlara direnç geliştirdikleri bildirilmiştir. Antimikrobiyal ilaçlara dirençli patojenlerin uygun olmayan antimikrobiyal ilaçlarla tedavisi başarısız klinik sonuçların alınmasına neden olmaktadır. Bu yüzden merkezlerin periyodik olarak, klinik öneme sahip anaerop bakterileri direnç eğilimleriaçısından izlemeleri önerilmektedir. Çalışmamızda klinik örneklerden izole edilen GPAK’ın antibiyotik duyarlılık durumlarını belirlemek amaçlanmıştır. Çalışmaya 2013-2015 yılları arasında Marmara ÜniversiteHastanesinde izole edilen, tekrar etmeyen 100 patojen GPAK alınmıştır. İzolatlar, geleneksel yöntemler,“matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry system (MALDI-TOF MS)”(VITEK MS; v3.0, bioMerieux, Fransa) ve 16S rRNA gen dizi analizi ile tanımlanmıştır. Antimikrobiyal duyarlılık testi, “Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI)” önerilerine göre agar dilüsyon yöntemiyle gerçekleştirilmiştir. Antibiyotik duyarlılık testi ile penisilin, amoksisilin/klavulonik asit (AMC), sefoksitin,meropenem, klindamisin, eritromisin, tetrasiklin, tigesiklin, kloramfenikol, moksifloksasin ve metronidazolantibiyotikleri çalışılmıştır. Minimum inhibitör konsantrasyonu (MİK) sonuçları “European Committee onAntimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST)” sınır değerlerine göre yorumlanmıştır. EUCAST rehberindeMİK sınır değerleri bulunmayan sefoksitin, tetrasiklin ve moksifloksasin için CLSI, tigesiklin için ise “Foodand Drug Administration (FDA)” MİK sınır değerleri ölçü alınmıştır. Yüz izolatın beş farklı GPAK; Parvomonas (%40), Finegoldia (%34), Peptoniphilus (%14), Peptostreptococcus (%10) ve Anaerococcus (%1) cinsinden oluştuğu saptanmıştır. Mikroorganizmaların tamamı meropenem, tigesiklin ve metronidazole duyarlıbulunmuştur. İzolatların penisilin, AMC, sefoksitin ve kloramfenikole oldukça duyarlı oldukları saptanmışve duyarlı olmayan izolat oranı %5 veya daha az bulunmuştur. Klindamisin, tetrasiklin ve moksifloksasinedirenç oranları ise sırasıyla; %14, %31 ve %24 olarak belirlenmiştir. İzolatların %11’i çok ilaca direnç göstermiştir. Metronidazol ve tigesiklin GPAK’a karşı yüksek in vitro aktivite göstermişlerdir, her ikisinin ampirik tedavi için seçilecek uygun antimikrobiyaller olduğunu söyleyebiliriz. Meropenemin etkinliği de yüksekbulunmuş ancak bu antimikrobiyalin direnç potansiyeline sahip diğer mikroorganizmaların eşlik ettiği ağırmikst enfeksiyonların tedavisinde kullanılmasının daha doğru olacağı izlenmiştir. GPAK enfeksiyonununtedavisinde sıklıkla kullanılan penisilin ve AMC’ye dirençli izolatların saptanması, GPAK’ın antimikrobiyalduyarlılık paternlerinin periyodik olarak izlenmesini gerekli kılmaktadır. Klindamisin, tetrasiklin ve moksifloksasine karşı yüksek direnç oranları, bu antimikrobiyal ilaçların, etkenin antimikrobiyal duyarlılık sonucubelirlenmeden enfeksiyon tedavisi için kullanılmaması gerektiğini göstermektedir. Bu çalışma, Türkiye’debugüne kadar yapılmış en fazla GPAK izolatının ele alındığı duyarlılık çalışmasıdır. Sonuçlarımızın gerekhastanemiz gerekse ülkemiz için iyi bir sürveyans verisi olacağını düşünmekteyiz.

Gram-positive anaerobic cocci (GPAC), a large group of anaerobic bacteria, are the members of the_x000D_ normal microbiota that colonizes the skin and mucosal surfaces of the human body. However, in case of_x000D_ a wound or when the host becomes immunocompromised, GPAC can cause invasive and most frequently mixed infections. GPAC are the second most frequently isolated bacteria in anaerobic infections._x000D_ Although the studies are limited, GPAC have been reported to develop resistance to antimicrobial drugs._x000D_ The resistance of the pathogens to the antimicrobials and improper therapy can cause poor clinical outcomes. Therefore, monitoring of the resistance trends of regional clinically important anaerobic bacteria_x000D_ periodically is recommended. In our study, we aimed to determine the antimicrobial susceptibility profiles of clinically important GPAC. A total of 100 non-duplicated pathogenic GPAC isolates were collected_x000D_ from Marmara University Hospital between 2013 and 2015. The isolates were identified by using conventional methods, “matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry system_x000D_ (MALDI-TOF MS)” (VITEK MS; v3.0, bioMerieux, France) and 16S rRNA gene sequencing. Antimicrobial_x000D_ susceptibility test was carried out by the agar dilution method according to the Clinical and Laboratory_x000D_ Standards Institute (CLSI) guidelines. The following antimicrobials were tested: penicillin, amoxicillin/_x000D_ clavulanic acid (AMC), cefoxitin, meropenem, clindamycin, erythromycin, tetracycline, tigecycline, chloramphenicol, moxifloxacin and metronidazole. The minimum inhibitory concentration (MIC) results_x000D_ were interpreted according to the breakpoints described by the European Committee on Antimicrobial_x000D_ Susceptibility Testing (EUCAST). Breakpoints recommended by CLSI for cefoxitin, tetracycline and moxifloxacin, and breakpoint recommended by Food and Drug Administration (FDA) for tigecycline were_x000D_ used since there were no EUCAST breakpoints for these antimicrobials. MIC50 and MIC90 values were_x000D_ determined for erythromycin since the breakpoint was not described by EUCAST, CLSI or FDA guidelines._x000D_ The identification results showed that the strains (n= 100) consisted of five different GPAC genus; Parvomonas (40%), Finegoldia (34%), Peptoniphilus (14%), Peptostreptococcus (10%) and Anaerococcus (1%)._x000D_ All of the organisms were susceptible to meropenem, tigecycline and metronidazole. The isolates were_x000D_ highly susceptible to penicillin, AMC, cefoxitin, and chloramphenicol, since the resistance rates against_x000D_ these antimicrobials were 5% or less. The resistance rates against clindamycin, tetracycline and moxifloxacin were 14%, 31% and 24%, respectively. In total, 11% of the isolates were multidrug resistant._x000D_ Metronidazole and tigecycline displayed high in vitro activity against GPAC and both are appropriate_x000D_ antimicrobials for the selection of empiric therapy. The effectiveness of meropenem was also found high,_x000D_ but it was observed that this antimicrobial would be more appropriate to use in the treatment of severe_x000D_ mixed infections accompanied by other microorganisms with the resistance potential. Detection of penicillin and AMC resistant isolates, which are frequently used in the treatment of GPAC infection, requires_x000D_ periodic monitoring of the antimicrobial susceptibility patterns of GPAC. The high rates of resistance_x000D_ against clindamycin, tetracycline and moksifloxacin indicated that these antimicrobials should not be_x000D_ used for empirical treatment of infections without prior antimicrobial susceptibility testing. This study is_x000D_ one of the largest susceptibility studies specifically carried out on GPAC to date in Turkey. We believe that_x000D_ our results will provide good surveillance data both for our hospital and our country